馬紅球菌探針法熒光定量PCR檢測試劑盒使用方法

馬紅球菌探針法熒光定量PCR檢測試劑盒使用方法:

1. 樣品處理（樣本處理區）

1.1 樣本前處理

按照試劑盒操作說明或者微生物樣品處理方法做好樣品前處理。

1.2 DNA 提取

根據您實驗室的具體情況和樣品類型，選擇適當的提取策略方法。為了使實驗結果穩定、有效、可靠，我們建議使用商品化的試劑盒進行提取，嚴格按照對應試劑盒說明書進行操作，樣本核酸提取過程中應避免污染，提取好的模板樣品如不能立即檢測，建議-15℃以下保存。

推薦采用我們公司研發生產的試劑盒：Hypure 病毒基因組 DNA 提取試劑盒

2. 試劑配制（試劑準備區）

2.1 從-15℃以下冰箱中取出試劑盒平衡到室溫（20～25℃），注意避免強光照射，待完全溶解后振蕩混勻并低速離心 10 s，使用低吸附吸頭分液取樣，避免試劑損失和浪費。

2.2 根據待檢測樣本總數，設所需要的 PCR 反應管管數為 N(N=樣本數+1 管陰性對照+1 管陽性對照；樣品每滿 7 份，多配制 1 份)，每測試反應體系配制如下表：

試劑

鮭腎桿菌反應液

鮭腎桿菌擴增液

用量（樣本數為N）

19.5μL

0.5μL

2.3 在適當容積的無菌離心管中加入上述試劑，充分振蕩混勻后 2000 rpm 離心 10 s，按照 20 μL/管分裝量將試劑分裝至八聯 PCR 反應管中。

2.4 蓋緊八聯 PCR 反應管蓋, 并注意做好相應標識（請標記在八聯 PCR 反應管蓋兩端突出部位，切勿標記在八聯 PCR 反應管蓋中間，以免影響信號采集）。將 PCR 反應管轉移至樣本準備區，剩余試劑放回-15℃以下冰箱冷凍保存。

3. 加樣（樣本處理區）

將步驟 1.2 提取的 DNA、陽性質控品、陰性質控品各取 5μL，分別加入相應的反應管中，蓋好管蓋，混勻，短暫離心，核酸加樣過程中應避免污染。

4. PCR 擴增（核酸擴增區）

4.1 將待檢測反應管置于熒光定量 PCR 儀反應槽內, 并記錄放置順序。

4.2 設置好通道、樣品信息，反應體系設置為 25 μL；

熒光通道選擇：檢測通道選擇 FAM， 淬滅通道選擇 NONE，參比熒光選 NONE。

4.4 推薦循環參數設置：

步驟

循環數

溫度

時間

收集熒光信號

1

1 cycle

95℃

3min

否

2

40 cycle

95℃

15sec

否

55℃

30sec

否

5. 結果分析判定

5.1 結果分析條件設定

設置 Baseline 和 Threshold：一般直接按機器自動分析的結果分析，當曲線出現整體傾斜時，根據分析后圖像調節 Baseline 的 start 值(一般可在 3~15 范圍內調節)、stop 值(一般可在 5~20 范圍內調節)，以及 Threshold 的 Value 值(上下拖動閾值線至高于陰性對照)，重新分析結果。

5.2 結果判斷

陽性：檢測通道 Ct 值≤35.0，且曲線有明顯的指數增長曲線。

可疑：檢測通道 Ct 值>35.0，且出現典型擴增曲線的樣本建議重復試驗，重復試驗結果出現 Ct 值≤38.0 和典型擴增曲線者為陽性，否則為陰性。

陰性：檢測結果 Ct 值無 Ct 值，無明顯的擴增曲線。

6. 質控標準

陰性質控品：無明顯擴增曲線或無 Ct 值顯示；

陽性質控品：擴增曲線有明顯指數生長期，且 Ct 值≤30；

以上條件應同時滿足，否則實驗視為無效。

7. 產品性能指標

陰陽性參考品符合率：5 份陽性參考品符合率為 100％；10 份陰性參考品符合率為 100％。

最低檢測限：1.0×103copies/mL。

精密度：批內、批間精密度檢測 Ct 值的變異系數（CV）均小于等于 3%。

8. 檢測方法的局限性

樣本檢測結果與樣本收集、處理、運送以及保存質量有關；

樣本提取過程中沒有控制好交叉污染，會出現假陽性結果；

陽性對照、擴增產物泄漏，會導致假陽性結果；

病原體在流行過程中基因突變、重組，會導致假陰性結果；

不同的提取方法存在提取效率差異，會導致假陰性結果；

試劑運輸，保存不當或試劑配制不準確引起的試劑檢測效能下降，出現假陰性或定量檢測不準確的結果；

本檢測結果僅供參考，如須確診請結合臨床癥狀以及其他檢測手段。